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Der Ginkgo (Ginkgo biloba)

Jörg Weiß, vom 22.10.2016

Wenn man sich mit Palmfarnen beschäftigt, schaut man sich irgendwann auch einmal bei der Verwandtschaft um und findet die Gymnospermen (Nacktsamer) mit den folgenden Unterabteilung:
  • Coniferophytina mit den Klassen Ginkgoatae (der Ginkgo) und Pinatae (die Nadelbäume)
  • Cycadophytina mit den Klassen Cycadatae (hier sind die Palmfarne unter gebracht) und Gnetalae (z.B. Welwitschia) und
  • Lyginopteridatae (Samenfarne).
Der Ginkgo ist der einzige Überlebende in der Klasse Ginkgoatae und von daher auch noch einmal einen genaueren Blick wert. Gut, dass wir einen im Garten haben, da ist die Probenahme schnell erledigt.
Artikelinhalt

Der Ginkgo - Ginkgo biloba

Bild 1: Fossile Blätter der ausgestorbenen Art Ginkgoites huttonii. Aufnahme einer Versteinerung aus dem Palaeontologischen Museum München, Fundort Yorkshire Bild 1: Fossile Blätter der ausgestorbenen Art Ginkgoites huttonii. Aufnahme einer Versteinerung aus dem Palaeontologischen Museum München, Fundort Yorkshire
Der Ginkgo (Ginkgo biloba) ist eine in China heimische, heute weltweit ange- pflanzte Baumart. Er ist der einzige le- bende Vertreter der Ginkgoales, einer ansonsten ausgestorbenen Gruppe von Samenpflanzen, die wir heute nur noch aus Versteinerungen kennen.
Natürliche Populationen sind nur aus den Provinzen Chongqing und Guizhou im Südwesten Chinas bekannt.
In Ostasien wird der Baum wegen seiner essbaren Samen oder als Tempelbaum kultiviert. Er wurde von holländischen Seefahrern aus Japan nach Europa gebracht und wird hier seit etwa 1730 als Zierbaum gepflanzt.
Zum Jahrtausendwechsel erklärte das deutsche „Kuratorium Baum des Jahres“ Ginkgo biloba zum Mahnmal für Umweltschutz und Frieden und zum Baum des Jahrtausends.
Bild 2: Typischer Ginkgo
Bild 2: Typischer Ginkgo
Der Ginkgo ist ein sommergrüner Baum, das heißt, er wirft im Herbst seine Blätter ab. Er kann 1000 Jahre und älter werden und Wuchshöhen von bis zu 40 Metern bei einem Brusthöhendurchmesser (BHD) von 1 bis 4 Meter erreichen. Ein Exemplar aus Korea besitzt eine Höhe von 64 Meter und einen BHD von 4,45 Metern. Der junge Baum wächst meistens schlank und auffallend gerade in die Höhe. Sein Umriss ist pyramidenförmig und er ist nur spärlich beastet. Dies ändert sich zunehmend beim älteren Baum ab 25 Jahren, dessen Äste sich immer mehr in die Waagerechte bewegen und so eine ausladende, mächtige Baumkrone bilden können. Meistens besitzt der Ginkgo zwei Haupttriebe, von denen einer schwächer ausgebildet ist. Bäume, die unter Stress stehen, können in Bodennähe oder darunter Sekundär- stämme bilden, die aus wurzelartig wachsenden Trieben entstehen.
Bild 3: Illustration zum Ginkgo
Bild 3: Illustration zum Ginkgo
Die Äste bilden Langtriebe und Kurztriebe aus. Die Langtriebe können je nach Bedingungen zwischen 20 und 100 Zentimeter im Jahr wachsen. Aus den Langtrieben wachsen versetzte (wechselständige) Blätter, aus deren Blattstielansätzen wiederum achselständige Knospen wachsen. Kurztriebe sind sehr langlebig – sie werden bis 60 Jahre alt und wachsen häufig nur ein paar Millimeter im Jahr, weshalb sie kaum eine Länge von 20 Zentimeter erreichen. Kurztriebe können sich ganz unerwartet zu Langtrieben entwickeln.
Bild 4: Ginkgo im Botanischen Garten der Universität Bonn. Hier wurde ein weiblicher Baum auf einen männlichen Baum aufgepfropft, der männliche Pflanze steht aufrecht im Hintergrund, während sich die weibliche Pflanze im Vordergrund eher in die Breite entwickelt hat. Das Vorgehen stammt aus einer Zeit, als der Ginkgo noch eine seltene Rarität war und sollte dem empfangenden Garten die Möglichkeit geben, den Baum zu vermehren.
Bild 4: Ginkgo im Botanischen Garten der Universität Bonn. Hier wurde ein weiblicher Baum auf einen männlichen Baum aufgepfropft, der männliche Pflanze steht aufrecht im Hintergrund, während sich die weibliche Pflanze im Vordergrund eher in die Breite entwickelt hat. Das Vorgehen stammt aus einer Zeit, als der Ginkgo noch eine seltene Rarität war und sollte dem empfangenden Garten die Möglichkeit geben, den Baum zu vermehren.
Das harzfreie, weiche und leichte Holz des Ginkgos weist eine feine Textur auf und ähnelt dem der entwicklungsgeschichtlich jüngeren Koniferen. Das hellbraune Kernholz lässt sich nur schwer vom hellgelben Splintholz unterscheiden. An Stammkrümmungen oder Ästen entsteht häufig Druckholz, das unabhängig von der Kontrolle des Hauptsprosses wächst. Im Gegensatz zu Nadelhölzern sind bei dieser Art Tracheiden in verschiedenen Größen vorzufinden. Bei den Radialwänden der Tracheiden können ein bis zwei, manchmal auch drei Reihen von Hoftüpfeln festgestellt werden.
Rinde
Die Borke von ausgewachsenen Bäumen ist dunkelgrau, rau, tief gefurcht und schwer entflammbar; dies macht die Bäume mäßig feuerresistent. Bei jüngeren Stämmen ist sie graubraun und weist hellbraune Risse auf. Die Rinde einjähriger Zweige ist hellgrau und geht bei zweijährigen Zweigen ins Hellbraune über.
Während bei Altbäumen die Seitenwurzeln dominieren, bilden Jungbäume eine bis zu einen Meter lange Pfahlwurzel aus. Anders als in vielen Litera- turberichten dargestellt, bildet der Ginkgo keine Wurzelbrut aus. Der Baum hat relativ dicke Feinwurzeln von über 0,5 Millimeter, die von sehr vielen Wurzelhaaren bedeckt sind.

Der Ginkgo besitzt die Fähigkeit, bei schlechten Umweltbedingungen über dem Boden „aereal chichi“ und unter dem Boden „basal chichi“ zu bilden. „Aereal chichi“ sind einem Tropfstein ähnelnde (stalaktitenartige) verholzte, über einen Meter lange Anschwellungen, die bei sehr alten Ginkgobäumen an den Ästen oder am Stamm in Asthöhe aus überwallten Sprossknospen entstehen. Berühren diese verholzten Anschwellungen den Boden, entstehen unter günstigen Bedingungen zahlreiche vegetative Sprosse, die sich zu einer eigenständigen Pflanze entwickeln können. „Basal chichi“ sind verholzte, rhizomähnliche Anschwellungen, aus denen meist Sekundärstämme und Adventivwurzeln hervorgehen. Die Entwicklung der „basal chichi“ ist meistens auf wurzelartige, zur Schwerkraft (positiv geotrop) wachsende Triebe (auch Lignotuber genannt) zurückzuführen. Stimuliert durch traumatische Reize treibt eine dieser Knospen in den Achseln der beiden Kotyledonen aus, und die entsprechenden Triebe wachsen vom Spross in Richtung Schwerkraft. Auch hier kann eine eigenständige Pflanze entstehen, die aber meist mit der Mutterpflanze verbunden bleibt.
Bild 5: Ein Blatt des Ginkgo
Bild 5: Ein Blatt des Ginkgo
Sehr auffällig sind die Terminalknospen an den Sprossenden. Sie sind hellbraun, haben einen Durchmesser von 2 bis 5 mm und sind von kleinen Blättern ohne Achselknospen umgeben, wobei sich die Tegmente schuppenartig anordnen.

Eine Besonderheit in der Pflanzenwelt stellen die sehr charakteristischen fächerförmigen, breiten Laubblätter dar. Sie sind in der Mitte mehr oder weniger stark eingekerbt und die Blattform variiert je nach der Stellung am Trieb und der Wuchskraft des Baumes, weshalb kaum ein Ginkgo-Blatt dem anderen gleicht. Blätter von jungen Bäumen sind deutlich anders geformt als die von alten Bäumen (Altersdimorphismus). An Kurztrieben und an der Basis von Langtrieben erreichen die Blätter eine Breite von vier bis acht Zentimeter und sind entweder ungeteilt oder durch Einschnitt zweilappig. Die Blätter an den Spitzen von Langtrieben besitzen deutlich tiefere Ausbuchtungen, welche die Blätter in zwei oder mehr Lappen teilen. An den Langtrieben werden die Blätter zwischen sechs und zehn Zentimeter breit. Der Blattstiel wird zwischen vier und zehn Zentimeter lang. Alle Blätter sind gabelnervig (dichotom), evolutionär betrachtet ein sehr ursprüngliches Merkmal. Sie sind zu Beginn ihres Wachstums im Frühjahr hellgrün und dunkeln über den Sommer nach, im Herbst färben sie sich auffallend hellgelb bis goldgelb und fallen schließlich etwa Anfang November ab.
Bild 6: die abgefallenen Ginkgoblätter bedecken im Herbst den gesamten Boden unter dem Baum
Bild 6: die abgefallenen Ginkgoblätter bedecken im Herbst den gesamten Boden unter dem Baum
Der Ginkgo ist ein Windbestäuber und blüht im März, er ist zweihäusig getrenntgeschlechtig (diözisch), es existieren also männliche und weibliche Pflanzen. Gelegentlich treten einhäusig getrenntgeschlechtliche (monözische) Bäume auf. Die Bäume unterschiedlichen Geschlechts sind bis zur Geschlechtsreife, die erst im Alter zwischen 20 und 35 Jahren erfolgt, äußerlich kaum voneinander zu unterscheiden. Weibliche und männliche Blüten wachsen an den Achseln von Laub- und Niederblättern aus mehrjährigen Kurztrieben heran.

Männliche Blüten haben das Aussehen von 2 bis 3 cm langen Kätzchen. Sie bestehen aus vielen an einer gestreckten Achse schraubig angeordneten Staubblättern (Mikrosporophyllen). Die Mikrosporophylle bestehen aus einem dünnen Stiel (Staubfaden) mit zwei (manchmal bis zu vier) an der Spitze (einer kurzen runden Apikalerweiterung) hängenden Mikrosporangien (Pollensäcken), in denen die Pollen gebildet werden. Die Blüten treiben vor den eigentlichen Blättern aus und fallen nach dem Bestäuben je nach Temperatur von Anfang April bis Ende Mai wieder ab. Der kahnförmige Pollen hat eine Größe von 30 µm × 10 µm.
Bild 7: Männliche Blüten
Bild 7: Männliche Blüten
Die 2 bis 3 mm großen Samenanlagen (weibliche Blüten) stehen zu zweit an einem sich apikal gabelnden 1 bis 1,5 cm langen Stiel. Gelegentlich ist nur eine, in manchen Fällen sind mehr als zwei zusätzliche Samenanlagen pro Stiel vorzufinden, von denen meist nur eine ausreift. Sie bestehen aus einem äußeren Integument mit einer als Mikropyle bezeichneten Öffnung im oberen Bereich. Im Inneren der Samenanlagen befindet sich das vom Integument umhüllte Megasporangium (Nucellus), in dessen Innerem sich wiederum die funktionsfähige Megaspore befindet.
Bild 8: Weibliche Blüten
Bild 8: Weibliche Blüten
Der nach der Befruchtung aus der Samenanlage entstandene Ginkgosamen ähnelt äußerlich den Mirabellen und hat eine Größe von 20 bis 30 mm × 16 bis 24 mm. Er besteht aus einem inneren Embryo, eingebettet in das Nährgewebe (primäres Endosperm) des weiblichen Gametophyten, das von drei Schichten umgeben ist: der dünnhäutigen Innenschicht (Endotesta), einer harten verholzten Mittelschicht (Sklerotesta) und einer dicken Samenschale (Sarcotesta), die früher einmal das Integument der Samenanlage war. Die sich entwickelnde Samenschale ist bis zur Reife im Herbst grün, bei Kälteeinbruch wird sie gelb, bis der Samen schließlich abfällt. Die Samenschale entwickelt im ausgereiften Zustand einen unangenehmen Geruch nach ranziger Butter. Verantwortlich dafür sind die in der Samenschale enthaltenen Fettsäuren Buttersäure und Capronsäure. Die ebenfalls enthaltenen Phenole können durch Austreten des Saftes zu Hautreizungen und Allergien führen. Der Ginkgosamen ohne Samenschale (der Kern) hat eine Größe von 19 bis 30 mm × 11 bis 14 mm und ein Tausendkorngewicht von 1500 Gramm.
Bilder 9a: Unreifer Ginkgo Samen
Bilder 9a: Unreifer Ginkgo Samen
Bilder 9b: Reifer Ginkgo Samen
Bilder 9b: Reifer Ginkgo Samen
Bild 10: Ginkgo Samen im Längsschnitt (makroskopisch), der einfach mit einem Messer durchtrennte Samen lässt den Aufbau gut erkennen.
Bild 10: Ginkgo Samen im Längsschnitt (makroskopisch), der einfach mit einem Messer durchtrennte Samen lässt den Aufbau gut erkennen.

Kurz zur Präparation

Die Proben in Form von einem Langtrieb und einem Kurztrieb habe ich in AFE stückfixiert, während ich das Blatt frisch geschnitten und dann fixiert habe.
Geschnitten habe ich die Triebe freistehend auf dem Handzylindermikrotom mit Leica Einmalklingen im SHK-Klingenhalter. Die Schnittdicke beträgt rund 60 µm.
Blatt und Blattstiel kamen in Möhreneinbettung unters Messer, auch hier mit einer Schnittdicke von ca. 60 µm.
Nach dem Schnitt bzw. der Schnittfixierung in AFE für ca. 9 Stunden wurden die Schnitte in Aqua dest überführt.
Anschließend habe ich die Schnitte dann für rund 3 Minuten in Klorix (1:4 in Aqua dest.) gebleicht und nach guten Ausspülen etwa 20 Stunden mit Chloralhydrat entfärbt (250g auf 100ml Aqua dest.). Danach war wieder gründliches Spülen angesagt.
Nach dieser recht aufwändigen Vorbereitung wurde dann mit Dujardin Grün nach Rolf-Dieter Müller gefärbt.
Eingedeckt sind die Schnitte - nach gründlichem Entwässern in reinem Isopropanol - in Euparal.
Weitere Informationen zur Erstellung botanischer Dauerpräparate finden Sie auf der zugehörigen Themenseite.

Die verwendete Technik

Alle Aufnahmen entstanden auf dem Leica DM E mit den Objektiven NPlan 5 und 40x sowie den 10x und 20x PlanApos. Die Kamera ist eine Canon Powershot A520 mit Herrmannscher Okularadaption. Zur Zeit nutze ich am Adapter ein Zeiss KPL 10x, das mit den Leica-Objektiven sehr gut harmoniert. Die Steuerung der Kamera erfolgt am PC mit dem Programm PSRemote und der Vorschub wird manuell anhand der Skala am Feintrieb des DM E eingestellt.
Alle Mikroaufnahmen sind mit Zerene Stacker V1.04 (64bit) gestackt. Die anschließende Nachbereitung beschränkt sich auf die Normalisierung und ein leichtes Nachschärfen nach dem Verkleinern auf die 1024er Auflösung (alles mit XNView in der aktuellen Version). Bei stärker verrauschten Aufnahmen lasse ich aber auch mal Neat Image ran.

Der Langtrieb unter dem Mikroskop

Beginnen wir den mikroskopischen Spaziergang nun mit dem Langtrieb! Der Zweig war mit ca. 5 mm Durchmesser zu dick für eine Übersichtsaufnahme, also schauen wir ihn uns von innen nach außen an.
Bilder 11a,b: Markparenchym des Langtriebs, Bild 11b mit Beschriftung
  • Bild 11a: Markparenchym des Langtriebs; Vergrößerung 100x, Stapel aus 22 Bildern
  • Bild 11b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Mitten im Markparenchym sitzt ein Sekretgang und es gibt einige Drusen. Begrenzt wird das grob sternförmige Mark vom Protoxylem des Holzteils.
Informationen zu den Abkürzungen im Bild 11b sowie den folgenden beschrifteten Aufnahmen finden Sie hier auf unserer Webseite.
Bilder 12a,b: Primäres Xylem. Bild 12b mit Beschriftung
  • Bild 12a: Primäres Xylem; Vergrößerung 200x, Stapel aus 25 Bildern
  • Bild 12b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Wir sehen das primäre Xylem, das ein Stück ins Markparenchym hinein ragt, gefolgt vom regulären Xylem, dem Holzteil des Triebes. Die lose im Gewebe liegenden Spiralverstärkungen der Tracheiden lassen vermuten, dass diese nicht mehr funktional sind (Obliteration).
Bilder 13a,b: Das Xylem, Bild 13b mit Beschriftung
  • Bild 13a: Das Xylem; Vergrößerung 100x, Stapel aus 23 Bildern
  • Bild 13b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Das Xylem zeigt den auch für die Pinatea typischen Aufbau aus Tracheiden und wird regelmäßig von Markstrahlen unterbrochen. Auch die Jahresringe sind erkennbar: der Ast ist drei Jahre alt.
Im Anschluss nach außen finden wir das Cambium und das Phloem.
Bilder 14a,b: Cambium, Phloem und Rindenparenchym, Bild 14b mit Beschriftung
  • Bild 14a: Cambium, Phloem und Rindenparenchym; Vergrößerung 200x, Stapel aus 26 Bildern
  • Bild 14b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Auf dem Xylem, im Bild unten, liegt das Cambium auf, gefolgt vom Phloem, dessen Zellen durch die Präparation etwas zusammen geschoben sind. Am äußeren Rand des Phloems finden wir zerdrückte Zellen, die nicht mehr in Funktion sind (Obliteration). Daran schließt sich das Rindenparenchym an, das auch nach zwei Jahren sekundären Wachstums noch vorhanden ist. Dort finden wir Sklerenchymfasern, Drusen und einige Sekretgänge, die wir im folgenden genauer anschauen.
Bilder 15a,b: Sekretgang im Rindenparenchym, Bild 15b mit Beschriftung
  • Bild 15a: Sekretgang im Rindenparenchym; Vergrößerung 200x, Stapel aus 23 Bildern
  • Bild 15b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Der Sekretgang zeigt den typischen Aufbau: der Hohlraum wird von einem Ring feiner Drüsenzellen umschlossen, die an einem äußeren Ring sklerifizierter Zellen anliegen.
Leider ist der Schnitt etwas dick geraten, daher die schlechte Differenzierung des umgebenden Rindenparenchyms.
Bilder 16a,b: Das Periderm, Bild 16b mit Beschriftung
  • Bild 16a: Das Periderm; Vergrößerung 200x, Stapel aus 37 Bilder
  • Bild 16b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Das Periderm liegt auf dem Rindenparenchym auf und besteht aus einem einschichtigen Phelloderm, dem Phellogen und dem verkorkten Phellem mit Suberin in den Zellwänden.

Der Kurztrieb unter dem Mikroskop

Der Kurztrieb hat einen ganz ähnlichen Aufbau wie der Langtrieb, jedoch mit einem deutlich breiteren Ring aus Rindenparenchym, in den die Blattspuren eingelagert sind. Er ließ sich leider nur sehr schlecht schneiden, daher hier nur einige halbwegs vorzeigbare Detailaufnahmen.
Bilder 17a,b: Markparenchym des Kurztriebs mit einem beim Schnitt aus dem Gewebe gezogenen Sklerenchyfaser-Idioblasten,, Bild 17b mit Beschriftung
  • Bild 17a: Markparenchym des Kurztriebs mit einem beim Schnitt aus dem Gewebe gezogenen Sklerenchyfaser-Idioblasten; Vergrößerung 200x, Stapel aus 31 Bildern
  • Bild 17b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Der Aufbau des Marks von Kurz- und Langtrieb ist identisch. Der Idioblast stammt vermutlich aus dem Rindenparenchym und wurde hier hin "verschleppt".
Bilder 18a,b: Blattspuren im Rindenparenchym des Kurztriebs, Bild 18b mit Beschriftung
  • Bild 18a: Blattspuren im Rindenparenchym des Kurztriebg; Vergrößerung 100x, Stapel aus je 31 Bildern
  • Bild 18b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Die Blattspur ist sehr schräg angeschnitten, daher überlagern sich die Tracheidenzellen zu roten Bändern.
Bilder 19a-c: Rindenparenchym des Kurztriebs, Bild 19b mit Beschriftung
  • Bild 19a: Rindenparenchym des Kurztriebs; Vergrößerung 200x, Stapel aus je 49 Bildern
  • Bild 19b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
  • Bild 19c: Die Aufnahme in polarisiertem Licht lässt die vielen eingelagerten Calciumoxalat-Drusen besonders gut erkennen; Vergrößerung 100x, Stapel aus 25 Bildern
Im Rindenparenchym des Kurztriebs finden wir sehr viele Calciumoxalat-Drusen und die eingelagerten Sklerenchymfaser-Idioblasten.

Das Blatt unter dem Mikroskop

Nun zum Blatt, erst der Blattstiel (Petiolus), dann die Blattspreite:
Bilder 20a-f: Blattstiel des Ginkgo, Bilder 20b, d & f mit Beschriftung
  • Bild 20a: Blattstiel des Ginkgo, ungefärbter frischer Schnitt; Vergrößerung 50x, Stapel aus 22 Bildern
  • Bild 20b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
  • Bild 20c: Blattstiel des Ginkgo,  Rindenparenchym und Hypodermis im ungefärbten frischen Schnitt; Vergrößerung 200x, Stapel aus 40 Bildern
  • Bild 20d: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
  • Bild 20e: Blattstiel des Ginkgo, Dujardin Grün; Vergrößerung 50x, Stapel aus 22 Bildern
  • Bild 20f: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Der Blattstiel enthält zwei v-förmig zueinander gestellte Leitbündel, die von einer Leitbündelscheide umgeben sind. Darin liegen Zellen eines Transfusionsparenchyms. In den Zellen des Rindenparenchyms außerhalb der Bündelscheide (Endodermis) sind - nach außen hin mehr werdend - Chloroplasten eingelagert. Drusen sind dort ebenso zu finden wie zwei bis 3 Sekretkanäle.
Unter der einreihigen Epidermis mit ihrer Cuticula liegt eine bis zu drei Reihen Zellen zählende sklerifizierte Hypodermis. Die Epidermis wird von einigen Stomata unterbrochen.
Bilder 21a-c: Leitbündel des Blattstiels, Bild 21b mit Beschriftung
  • Bild 21a: Leitbündel des Blattstiels; Vergrößerung 100x, Stapel aus 22 Bildern
  • Bild 21b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
  • Bild 21c: Eine ältere Aufnahme eines einzelnen Bündels gefärbt mit Brillantkresylblau; Vergrößerung 200x, Stapel aus 18 Bildern
Die Leitbündel werden aus dem oben liegenden Xylem mit dem darunter liegenden Phloem gebildet, ein Cambium ist nicht vorhanden (geschlossen kollaterales Bündel). Wo die Bündel aneinander stoßen, liegen oft einige Transfusionstracheiden. Außerhalb wieder einige Drusen im Rinden- parenchym.
Bilder 22a-b: Sekretgang des Blattstiels mit teilweise sklerifizierter Außenwand, Bild 22b mit Beschriftung
  • Bild 22a: Sekretgang des Blattstiels mit teilweise sklerifizierter Außenwand; Vergrößerung 400x, Stapel aus 5 Bildern
  • Bild 22b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Der Sekretgang zeigt den gleichen Aufbau wie im Spross, ist hier jedoch nur teilweise von sklerifizierten Zellen umgeben.
Bilder 23a-b: Stoma und Hypodermis, Bild 23b mit Beschriftung
  • Bild 23a: Stoma und Hypodermis; Vergrößerung 400x, Stapel aus je 18 Bildern
  • Bild 23b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Der Ginkgo hat Stomata gleichen Typs wie die Coniferales; die mächtige Hypodermis ist für den substomatären Interzellularraum unterbrochen. Die einzelnen Stoma liegen leicht eingesenkt in der Epidermis, so dass sich ein Vorhof mit cutinisierten Wänden bildet - eine Anpassung an trockene Standorte.

Zum Schluss werfen wir nun einen Blick auf die Blattspreite. Im Ginkgoblatt teilen sich die Leitbündel gabelförmig immer weiter auf, was sich auch mit dem bloßen Augen erkennen lässt. Somit finden sich auch in den Schnitten entsprechende Gabelungen.
Bilder 24a-d: Querschnitt durch den Blattspreit mit Leitbünde, Bilder 24b &d mit Beschriftung;
  • Bild 24a: Querschnitt durch den Blattspreit mit Leitbündel, ungefärbtes Frischmaterial; Vergrößerung 200x, Stapel aus 28 Bildern
  • Bild 23b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
  • Bild 24c: Querschnitt durch den Blattspreit mit Leitbündel; Vergrößerung 200x, Stapel aus 24 Bildern
  • Bild 23d: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Eingebettet in ein dichtzelliges Assimilationsparenchym, das in der Blattmitte von einem nur wenig lockereren Schwammparenchym unterbrochen wird, liegt ein Leitbündel in seiner auch hier vorhandenen Leitbündelscheide. Die von Transfusionstracheiden gebildet bzw. unterbrochen wird. Im Mesophyll wieder viele Calciumoxalat-Drusen.
Bilder 25a-c: Leitbündel knapp oberhalb einer Gabelung, Bild 25c mit Beschriftung
  • Bild 25a: Leitbündel knapp oberhalb einer Gabelung, ungefärbtes Frischmaterial;  Vergrößerung 200x, Stapel aus 15 Bildern
  • Bild 25b: Leitbündel knapp oberhalb einer Gabelung; Vergrößerung 200x, Stapel aus 29 Bildern
  • Bild 25c: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Die Leitbündel haben bereits eine eigene, in der Mitte aneinander liegende Leitbündelscheide, der generelle Aufbau entspricht dem des einzelnen Bündels.
Bilder 26a,b: Auch in den Blättern gibt es Sekretgänge, Bild 25b mit Beschriftung
  • Bild 26a: Auch in den Blättern gibt es Sekretgänge; Vergrößerung 200x, Stapel aus 10 Bildern
  • Bild 26b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Der Gang ist schräg getroffen und sieht daher so aus, als ob er unten geschlossen wäre. Der Aufbau ist der gleiche wie bei den Sekretgängen des Sprosses und des Blattstiels, nur ist der äußere Zellring hier nicht sklerifiziert.
Bilder 27a,b: Epidermis und Cuticula, Bild 27b mit Beschriftung
  • Bild 27a: Epidermis und Cuticula; Vergrößerung 400x, Stapel aus 10 Bildern
  • Bild 27b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Auf der einreihigen Epidermis sitzt eine ca. 2 µm dicke Cuticula.
Bilder 28a,b: Stoma an der Blattunterseite, Bild 28b mit Beschriftung
  • Bild 28a: Stoma an der Blattunterseite; Vergrößerung 400x, Stapel aus 14 Bildern
  • Bild 28b: Die selbe Aufnahme wie im Bild zuvor, jedoch mit Beschriftung
Wir erkennen den gleichen Aufbau wie beim Blattstiel, nur die Hypodermis fehlt.
Literatur und Links
[1]  Botany for Degree Students - Gymnosperms
       Vasishta, Sinha, Kumar, S.Chand Reprint 2016
       S. 289 ff.

[2]
 Pflanzenanatomie
       Katherine Esau, Gustav Fischer Verlag, 1969
      
[3]  Pflanzenanatomisches Praktikum I
       Braune, Leman, Taubert, Spektrum 2007

[4]  Botanische Schnitte mit dem Zylindermikrotom
       Jörg Weiß, MBK 2011

[5]  Dujardin Grün - eine alte Färbung für botanische Schnitte
       im neuen Gewand
       Dujardin Grün Färbung von Rolf-Dieter Müller, MKB 2011

[6]  Tabelle der Abkürzungen zur Pflanzenanatomie
       Jörg Weiß, MKB 2013 

Bildquellen
  • Bild 1: Fossile Blätter der ausgestorbenen Art Ginkgoites huttonii
    Wikipedia, User Ghedoghedo, CC BY-SA 3.0
  • Bild 2: Typischer Ginkgo
    Wikipedia, User Cayambe, CC BY-SA 3.0
  • Bild 3: Illustration zum Ginkgo
    Wikipedia, Philipp Franz von Siebold and Joseph Gerhard Zuccarini
    Flora Japonica, Sectio Prima (Tafelband), 1870, gemeinfrei
  • Bild 5: Ein Blatt des Ginkgo
    Wikipedia
  • Bild 7: Männliche Blüten
    Wikipedia
  • Bild 8: Weibliche Blüten
    Wikipedia, Marcin Kolasinski, GFDL
  • Bild 9b: Reifer Ginkgo Samen
    Wikipedia, User Aomorikuma, CC BY-SA 3.0
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Die Walnuss-Fruchtfliege (Rhagoletis suavis), Aufnahme von Horst-Dieter Döricht.
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August 2016
Methylsulfonal-Kristalle, Aufnahme von Frank Fox.
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Juli 2016
Das Säulenglöckchen (Epistylis sp.) in seiner vollen Pracht. Aufnahme von Frank Fox.
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Juni 2016
Wasserspeicherzelle im Mesophyll des Zylindrischen Bogenhanfs (Sansevieria cylindrica), frischer Querschnitt gefärbt mit Toluidinblau. Aufnahme von Jörg Weiß.
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Mai 2016
Einaugen-Muschelkrebs (Cypria opthalmica) von Horst-Dieter Döricht
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April 2016
Fuß des Rüsselkäfers Eupholus linnei, Aufnahme von Frank Fox.
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März 2016
Frischer Schnitt eines Fiederdorns der Zwerg-Dattelpalme in der Primärfluoreszenz bei 365 nm Anregungswellenlänge, Aufnahme von Dr. Horst Wörmann.
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Februar 2016
SEM-Aufnahme eines Bärtierchens von Horst-Dieter Döricht
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Januar 2016
Elektrische Schaltkreise auf einem Chip im Auflicht DIC von Frank Fox
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Dezember 2015
Dunkelfeldaufnahme vom Grünen Trompetentierchen (Stentor polyxmorphus); Aufnahme von Frank Fox
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November 2015
Querschnitt durch das Blatt einer Welwitschie (Welwitschia mirabilis), Färbung W3Asim II; Aufnahme von Jörg Weiß
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Oktober 2015
Kopf einer Stechmückenlarve (Culex spec.) von Frank Fox
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September 2015
Das Lilienhähnchen (Liliceris lilli) von Horst-Dieter Döricht
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August 2015
Leitgewebe und Endodermis in der Wurzel des Muriel-Bambus (Fargesia murieliae). Foto von Jörg Weiß.
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Juli 2015
Schuppenhaare des Silbernen Grünrüsslers (Phyllobius argentatum). Foto von Horst-Dieter Döricht.
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Juni 2015
Wachstumskegel an der Sprossspitze der Weinrebe (Vitis vinifera) im Präparat von Bodo Braunstorfinger. Foto von Jörg Weiß.
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Mai 2015
Ein Reusen-Rädertier von Frank Fox
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April 2015
Die Diatomee Triceratium broeckii (Oamaru) in einer Aufnahme von Päule Heck
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März 2015
Uroleptopsis roscoviana, ein roter Cilliat, Aufnahme von Frank Fox
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Februar 2015
Drei Konidien des Echten Mehltaus auf einem Weizenblatt mit Keimschläuchen und Appressorien, Aufnahme von Jörg Weiß
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Januar 2015
Sklerenchymband im Spross der Kiwi (Actinidia deliciosa), Aufnahme von Jörg Weiß
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Dezember 2014
Die Diatomee Auliscus convolutus (Alen's Farm, Oamaru), Aufnahme von Päule Heck
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November 2014
Schale einer Diatomee im Interferenz-Phasenkontrast. Aufnahme von Frank Fox.
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Oktober 2014
Haare auf dem Brustpanzer einer Goldfliege (Lucilia sericata). Aufnahme von Horst-Dieter Döricht.
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September 2014
Stomagruben an der Blattunterseite eines frischen, unfixierten Schnittes des Oleanders (Nerium oleander) bei einer Vergrößerung von 200x. Aufnahme von Jörg Weiß.
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August 2014
Augen am Kopf einer Sprigspinne. Die Reflexe stammen von der Beleuchtung mit einem LED-Ringlicht. Aufnahme von Frank Fox.
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Juli 2014
Die Zieralge Micrasterias radians bei der Teilung. Aufnahme von Frank Fox.
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Juni 2014
Querschnitt durch einen siebenjährigen Spross des Chinesischen Blauregens (Wisteria sinensis, Durchmesser 21 mm) von Bodo Braunstorfinger. Aufnahme von Jörg Weiß
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Mai 2014
Männlicher Eibenzapfen (Taxus baccata) mit Pollen von Horst-Dieter Döricht
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April 2014
Spross des Efeus (Hedera helix) in W3Asim II - Färbung. Aufnahme mit einer Smartphone Kamera freihändig durch das Okular von einer Teilnehmerin der Lehrerfortbildung am Grotenbach Gymnasium Gummersbach.
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März 2014
Maritimer Fadenwurm im Polarisationskontrast von Frank Fox
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Februar 2014
Ungefärbter Querschnitt durch das Blatt des Pampasgrases (Cortaderia selloana) von Jörg Weiß
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Januar 2014
Parietin-Sublimation im freien Raum an Stahlwolle von Heike Buchmann
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Dezember 2013
Die Diatomee Hemiaulus proteus im Hellfeld von Päule Heck
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November 2013
Die Wimpernkugel Volvox aureus im Interphako von Frank Fox
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Oktober 2013
Zwei Algen der Art Micrasterias rotata, Aufnahme von Rudolf Krönung.
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September 2013
Rückenschild und Flügelansätze der Grünen Futterwanze, Aufnahme von Horst-Dieter Döricht
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August 2013
Mit W3Asim II gefärbter Querschnitt durch den Thallus eines Blasentangs (Fucus vesiculosus), Aufnahme von Jörg Weiß.
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Juli 2013
Gelbe Blattwespe (Nematus tibialis), Aufnahme von Horst-Dieter Döricht.
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Juni 2013
Gold in der lamellaren Verwachsung von Kupferkies (gelb) und Bornit (rotbraun). Grube Hohlestein an der Eisernhardt, Siegen. Aufnahme Prof. Holger Adelmann.
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Mai 2013
Spinnenfaden bei 1000-facher Vergrößerung im DIC. Präparation und Schwarzweiß-Aufnahme von Anton Berg.
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April 2013
Papyrus (Cyperus papyrus) ungefärbt in der Primärfluoreszenz. Präparation und Aufnahme von Rolf-Dieter Müller.
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März 2013
Diatomee im Interferenz-Phasenkontrast. Präparation und Aufnahme von Frank Fox.
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Februar 2013
Ungefärbter Querschnitt durch das Blatt einer Kamelie. Präparation und Aufnahme von Jörg Weiß.
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Januar 2013
Leitbündel aus dem Mittelstrang der Frucht eines Zitronenbaums (Citrus x limon). Das filigrane Präparat ist nur 7 µm dick und wurde von Anton Berg erstellt. Zum Vergleich: die meisten hier gezeigten botanischen Schnitte haben eine Dicke von ca. 50 µm. Aufnahme von Jörg Weiß.
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Dezember 2012
Anschliff einer Kohle aus der Grube Fürst Leopold in der Auflichtfluoreszenz; Anregung mit einer Wellenlänge von 470 nm. Aufnahme von Dr. Horst Wörmann.
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November 2012
Schwimmhaare auf der Blattoberseite eines tropischen Schwimmfarns aus der Familie Salvinia. Aufnahme von Frank Fox.
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Oktober 2012
Rezente Diatomee Bacteriastrum furcatum Shadbolt aus dem Golf von Thailand. Aufnahme von Päule Heck.
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September 2012
Die hier gezeigte Spaltöffnung aus Rhynie Chert Material ist 400 Millionen Jahre alt. Aufnahme von Holger Adelmann.
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August 2012
Eier einer Zuckmückenart (Chironomidae) im Phasenkontrast, Aufnahme von Frank Fox.
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Juli 2012
Porträt einer Frühen Adonislibelle (Pyrrhosoma nymphula), Aufnahme von Frank Fox.
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Juni 2012
Dünnschliff eines Quarzitschiefers aus den Italienischen Alpen, Dicke ca. 25 µm. Aufnahme von Holger Adelmann.
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Mai 2012
Tracheen im Xylem des Korallenbaums, Spross, Färbung W3Asim II, Vergrößerung 200x. Aufnahme von Jörg Weiß.
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April 2012
Porträt einer zwei Tage alten Fliegen. Aufnahme von Horst-Dieter Döricht.
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März 2012
Aus der Schmelze kristallisiertes Methylsulfonal im polarisierten Licht. Aufnahme von Frank Fox
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Februar 2012
Die Kieselalge Achnantes longipes. Aufnahme von Frank Fox
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Januar 2012
Primäres Xylem und Markparenchym aus dem Spross der Gewöhnlichen Jungfernrebe. Ungefärbtes Präparat, Aufnahme von Jörg Weiß.
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Dezember 2011
Flügelschuppen eines Großen Fuchses (Nymphalis polychloros) im Auflicht. Aufnahme Frank Fox.
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November 2011
'Dazu muss ich sagen, dass es mir nicht um irgendeine Form wissenschaftlicher Fotografie ging. Ich habe wilde Gemische hergestellt und dann nachgesehen, wie das Produkt aus sah. ... Genieß' das Spiel der Farben und Formen.' Aufnahme von Herne.
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Oktober 2011
Glockentierchen (Vorticellidae) im differenziellen Interferenzkontrast. Aufnahme von Frank Fox.
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September 2011
Die Radiolarie Hexacontium papillosum aus einem Präparat von Albert Elger. Aufnahme von Päule Heck.
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August 2011
Querschnitt durch den Spross des Gartenbambus (Fargesia murieliae). Vergrößerung 100x, Färbung W3Asim II. Aufnahme Jörg Weiß mit Leica C-Plan 10x an Leica DME. Kamera Canon PS A520.
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Juli 2011
Micrasterias rotata aus einer Wasserprobe von der Wuppertalsperre. Aufnahme Holger Adelmann mit der Moticam 2300 am Leitz Orthoplan mit 40er Plan Fluotar und DIC.
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Juni 2011
Bild 1
Angeschliffene Foraminifere aus einem Hydrobienkalk des Untermiozän. Fundort Dexheim bei Mainz. Präparation Fa. Krantz, Aufnahme Prof. Holger Adelmann.
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Juni 2011
Bild 2
Kopf mit Mundwerkzeugen und vorderes Körperdrittel einer nicht näher bestimmten Zuckmückenlarve (Chironomus sp.). Präparation und Aufnahme von Frank Fox.
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Mai 2011
Querschnitt vom Rollblatt des Strandhafers (Ammophila arenaria), Schnittdicke ca. 50 µm, Färbung Wacker W3A. Stitch aus 240 Einzelaufnahmen mit Zeiss Standard WL, Plan Apo 25x/0.65, Kamera Canon EOS 5D MK II mit Vollformat-Chip. Stitching mit Canon Photostitch.
Präparat von Jörg Weiß, Aufnahme von Joachim Schwanbeck.
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April 2011
Eidechsenschwanz (Houttuynia cordata), Abdruck von der Blattunterseite, erstellt mit UHU Hart. Hellfeld.
Vergrößerung 200x, Länge des Bildausschnitts im Objekt ca. 0,5 mm. Aufnahme und Präparation von Jörg Weiß.
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März 2011
Auskristallisierte Mineralstoffe aus flüssigem Kunstdünger. Zeiss Jenamed mit Planapochromat 12,4x CF250, polarisiert mit Lambda-Platte, Einzelaufnahme mit Vollformat-Kamera Canon 5D Mark II.  Aufnahme und Präparation von Frank Fox.
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Februar 2011
Nadelquerschnitt der Schlangenhaut-Kiefer (Pinus heldreichii). Aufnahme und Präparation von Rolf-Dieter Müller, Stitch aus ca. 70 Einzelbilder. Schnittdicke 25 µm, Färbung Wacker W3A (Acridinrot, Acriflavin, Astrablau).
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Januar 2011
Achtung, großes Bild!
Eidechsenschwanz (Houttuynia cordata), Leitbündel. Aufnahme von Prof. Holger Adelmann, Präparat von Jörg Weiß.
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Dezember 2010
Metapelit, Dicke ca. 25 µm, Präparation durch Willi Tschudin, Aufnahme von Dr. Horst Wörmann.
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November 2010
Simocephalus vetulus (Anomopoda), der Plattkopf- Wasserfloh. Aufnahme von Päule Heck.
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