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Die Kamera am Mikroskop - Grundlagen der Adaption

Jürgen Stahlschmidt trägt vor Jürgen Stahlschmidt trägt vor
Bonn, den 19.10.2017

Die Adaption einer - heute meist digitalen - Kamera ans eigene Mikroskop ist eine Herausforderung, der sich jeder Mikroskopiker, der das Gesehene auch im Bild dokumentieren und zum Beispiel in Foren zeigen möchte, stellen muss. Dabei gilt es viele Fallstricke zu beachten und eine Lösung zu finden, die zum Mikroskop und der gewählten bzw. verfügbaren Kamera passt und die gewünschte Bildqualität liefert.
In seinem Vortrag "Die Kamera am Mikroskop - Grundlagen der Adaption" stellte unser Referent Jürgen Stahlschmidt von der Naturwissenschaftlichen Vereinigung Hagen die wichtigsten Konzepte mit deren optischen und mechanischen Grundlagen zum Anschluss einer Kamera vor und gab jede Menge praktische Tipps, wie beispielsweise die Qualität einer Adaption geprüft und Optimierungsmöglichkeiten aufgezeigt werden können. Dazu hatte er auch verschiedene Adapterkonstruktionen mit gebracht, die im Auditorium die Runde machten.
Nicht zuletzt ein Zeichen für einen gelungenen Vortragsabend: schon während der Präsentation und auch danach entwickelte sich eine lebhafte Diskussion und ich denke, dass jeder der Teilnehmer etwas für seine eigene Mikroskop-Kamera-Kombination mit nehmen konnte.  
Jürgen Stahlschmidt im Kreis seiner aufmerksamen Zuhörer
Jürgen Stahlschmidt im Kreis seiner aufmerksamen Zuhörer
Grundsätzlich gibt es bei jedem Mikroskop zwei reelle Bilder, die für die Kameraadaption genutzt werden können: das Zwischenbild, das vom Objektiv oder der Tubuslinse in der Zwischenbildebene etwas unterhalb des oberen Tubusrandes erzeugt wird und das Bild des Okulars selbst, das in einem definierten Abstand oberhalb der letzten Okularlinse abgenommen werden kann.
Abhängig davon, ob es sich um ein endlich oder unendlich konstruiertes Mikroskop handelt und ob ggf. ein Trinotubus mit einem eigenen Kameraausgang zur Verfügung steht, sind nun verschiedene Adaptionen möglich. Dabei ist die Adaption der Kamera über ein - ggf. auch spezielles - Okular bzw. Fotookular mit einer entsprechenden Zwischenoptik für die Kamera die sauberste Lösung. Hier kann man sicher sein, ein im Sinne des Mikroskopherstellers komplett auskorrigiertes Bild zu erhalten, das über die Zwischenoptik (Relaisoptik) - oft ein so genanntes Pancake-Objektiv - optimal auf den Sensor der Kamera abgebildet werden kann. Dies ist auch bei den modernen "Undenlich"-Mikroskopen wichtig, da das Okular oft noch Restfehler behebt, die im reellen Zwischenbild noch vorhanden sind. Leider ist das auch die komplexeste und oft teuerste Lösung.
Optisch am einfachsten ist die Aufnahme des Zwischenbildes - hier reicht im Sinne einer "Ofenrohr-Adaption" in der Regel ein optikloser Tubus definierter Länge, der sicher stellt, dass das Zwischenbild und der Kamerasensor in einer Ebene liegen. Oft muss man aber kleine Abstriche in der Bildqualität machen, da nur wenige Mikroskope wie z.B. die Unendliche-Systeme von Nikon, über ein komplett auskorrigiertes Zwischenbild verfügen.
Man sieht: ein komplexes Thema, das von Jürgen Stahlschmidt ausführlich und verständlich dargestellt und mit vielen Bildern und Zeichnungen unterlegt wurde.
Impressionen vom Vortrag
  • Impressionen vom Vortrag
  • Impressionen vom Vortrag
  • Impressionen vom Vortrag
Wir danken Jürgen Stahlschmidt für seinen fundierten und interessanten Vortrag, mit dem er das Thema Kameraadaption sowohl für Anfänger als auch Alte Hasen verständlich und gewinnbringend dargestellt hat.

Zum Vortrag von Jürgen Stahlschmidt gibt es auch eine Thread im Mikroskopie-Forum, der über den folgenden Link aufgerufen werden kann:

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Text:
Jörg Weiß
Bilder: Rolf-Dieter Müller
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Gold in der lamellaren Verwachsung von Kupferkies (gelb) und Bornit (rotbraun). Grube Hohlestein an der Eisernhardt, Siegen. Aufnahme Prof. Holger Adelmann.
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Spinnenfaden bei 1000-facher Vergrößerung im DIC. Präparation und Schwarzweiß-Aufnahme von Anton Berg.
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Dünnschliff eines Quarzitschiefers aus den Italienischen Alpen, Dicke ca. 25 µm. Aufnahme von Holger Adelmann.
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Tracheen im Xylem des Korallenbaums, Spross, Färbung W3Asim II, Vergrößerung 200x. Aufnahme von Jörg Weiß.
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Aus der Schmelze kristallisiertes Methylsulfonal im polarisierten Licht. Aufnahme von Frank Fox
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Februar 2012
Die Kieselalge Achnantes longipes. Aufnahme von Frank Fox
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Januar 2012
Primäres Xylem und Markparenchym aus dem Spross der Gewöhnlichen Jungfernrebe. Ungefärbtes Präparat, Aufnahme von Jörg Weiß.
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Dezember 2011
Flügelschuppen eines Großen Fuchses (Nymphalis polychloros) im Auflicht. Aufnahme Frank Fox.
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'Dazu muss ich sagen, dass es mir nicht um irgendeine Form wissenschaftlicher Fotografie ging. Ich habe wilde Gemische hergestellt und dann nachgesehen, wie das Produkt aus sah. ... Genieß' das Spiel der Farben und Formen.' Aufnahme von Herne.
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Oktober 2011
Glockentierchen (Vorticellidae) im differenziellen Interferenzkontrast. Aufnahme von Frank Fox.
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September 2011
Die Radiolarie Hexacontium papillosum aus einem Präparat von Albert Elger. Aufnahme von Päule Heck.
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August 2011
Querschnitt durch den Spross des Gartenbambus (Fargesia murieliae). Vergrößerung 100x, Färbung W3Asim II. Aufnahme Jörg Weiß mit Leica C-Plan 10x an Leica DME. Kamera Canon PS A520.
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Juli 2011
Micrasterias rotata aus einer Wasserprobe von der Wuppertalsperre. Aufnahme Holger Adelmann mit der Moticam 2300 am Leitz Orthoplan mit 40er Plan Fluotar und DIC.
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Juni 2011
Bild 1
Angeschliffene Foraminifere aus einem Hydrobienkalk des Untermiozän. Fundort Dexheim bei Mainz. Präparation Fa. Krantz, Aufnahme Prof. Holger Adelmann.
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Juni 2011
Bild 2
Kopf mit Mundwerkzeugen und vorderes Körperdrittel einer nicht näher bestimmten Zuckmückenlarve (Chironomus sp.). Präparation und Aufnahme von Frank Fox.
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Mai 2011
Querschnitt vom Rollblatt des Strandhafers (Ammophila arenaria), Schnittdicke ca. 50 µm, Färbung Wacker W3A. Stitch aus 240 Einzelaufnahmen mit Zeiss Standard WL, Plan Apo 25x/0.65, Kamera Canon EOS 5D MK II mit Vollformat-Chip. Stitching mit Canon Photostitch.
Präparat von Jörg Weiß, Aufnahme von Joachim Schwanbeck.
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April 2011
Eidechsenschwanz (Houttuynia cordata), Abdruck von der Blattunterseite, erstellt mit UHU Hart. Hellfeld.
Vergrößerung 200x, Länge des Bildausschnitts im Objekt ca. 0,5 mm. Aufnahme und Präparation von Jörg Weiß.
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März 2011
Auskristallisierte Mineralstoffe aus flüssigem Kunstdünger. Zeiss Jenamed mit Planapochromat 12,4x CF250, polarisiert mit Lambda-Platte, Einzelaufnahme mit Vollformat-Kamera Canon 5D Mark II.  Aufnahme und Präparation von Frank Fox.
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Februar 2011
Nadelquerschnitt der Schlangenhaut-Kiefer (Pinus heldreichii). Aufnahme und Präparation von Rolf-Dieter Müller, Stitch aus ca. 70 Einzelbilder. Schnittdicke 25 µm, Färbung Wacker W3A (Acridinrot, Acriflavin, Astrablau).
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Januar 2011
Achtung, großes Bild!
Eidechsenschwanz (Houttuynia cordata), Leitbündel. Aufnahme von Prof. Holger Adelmann, Präparat von Jörg Weiß.
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Dezember 2010
Metapelit, Dicke ca. 25 µm, Präparation durch Willi Tschudin, Aufnahme von Dr. Horst Wörmann.
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November 2010
Simocephalus vetulus (Anomopoda), der Plattkopf- Wasserfloh. Aufnahme von Päule Heck.
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