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Seminar und Workshop zu Pflanzenanatomie II an der TU Darmstadt

Angeregte Gespräche unter Gleichgesinnten
TU Darmstadt, den 10.11.2012

Der Arbeitskreis Mikroskopie Rhein-Main-Neckar hatte wie im vergangenen Jahr zum Seminar und Workshop Pflanzenanatomie II in die Räumlichkeiten der Biologi- schen Fakultät der Tech- nischen Universität Darm- stadt geladen. Ziel der Veranstaltung war es wieder, verschiedene Me- thoden zur Erstellung von pflanzlichen Dauerpräparaten in Theorie und Praxis vorzustellen und anhand der so entstandenen Präparate auch einen Blick auf die Anatomie zu werfen. Diesmal lag der Schwerpunkt auf Freihandschnitten mit der Rasierklinge - vorgestellt von Dr. Detlef Kramer - und der PEG Einbettung von Dr. Rainer Teubner. Aber auch Rolf-Dieter Müller und Jörg Weiß vom MKB waren als Referenten mit dabei.
Freihandschnitt mit der Rasierklinge, gezeigt von Dr. Detlef Kramer.
Den Anfang machte Detlef Kramer, der am Beispiel der Luftwurzel der Echten Vanille (Vanilla planifolia) verschie- dene Freihand-Schnitt- techniken mit der Rasier- klinge vorstellte. Diese Freihandschnitte sind auch heute noch die Grundlage der pflanzenanatomischen Praktika an den Universitäten und somit weiterhin relevant. Sie erlauben zwar - abhängig vom Geschick des Schneidenden - in der Regel keine planen Schnitte über die gesamte Oberfläche der Probe, bieten aber schnelle Ergebnisse für eine Übersicht und vor Allem zum Zeichnen des gesehenen.
Dr. Rainer Teubner stellt die PEG 1500 Einbettung vor.
Im weiteren Verlauf der Veranstaltung stellte dann Rainer Teubner sein Verfahren zur PEG-Einbettung von Pflanzen- teilen vor. Durch diese wird die Probe sehr gut stabilisiert, was gerade auch bei schwammigen Geweben einen einfachen Schnitt ermöglicht.
Polyethylenglycol, kurz PEG, in der Pharmazie auch Macrogol, ist ein je nach Kettenlänge flüssiges oder festes, chemisch inertes, wasserlösliches und nicht-toxisches Polymer mit der allgemeinen Summenformel C2nH4n+2On+1. Aufgrund seiner Eigenschaften wird es in der Medizin, in der Pharmazie als Wirkstoffträger, in der Industrie, der zellbiologischen Forschung und der Kosmetik auf vielfältige Weise eingesetzt. Wir benötigen PEG 1500, das z.B. über Apotheken bezogen werden kann.
Zur Einbettung werden ca. 15 bis 40 mm lange Probenstücke in Stufen unterschiedlicher Konzentrationen von PEG 1500 gelegt, um ein Eindringen des Polyethylenglycols zu gewährleisten. Da PEG 1500 in ausgehärtetem, wasserfreien Zustand recht spröde ist, hat sich die Zugabe von ein wenig Glycerin bewährt, das mit dem PEG in wässriger Lösung gut mischbar ist. Aus der letzten Stufe lässt man die Probenstücke komplett trocknen, bis alles Wasser verdunstet ist.
Nach anschließendem abtrennen überschüssigen PEGs mit einem Skalpell oder Cutter sind die Proben bereit zum Schnitt. Dieser kann nach allen bekannten Verfahren erfolgen, was wir anhand der mitgebrachten Proben auch gleich ausprobiert haben. 
Rolf-Dieter Müller bei der Vorführung seiner W3Asim II Färbung.
Nach der Mittagspause im nahe gelegenen Restaurant Eulenpick wurden die am Vormittag mit den unterschiedlichen Verfahren erstellten Schnitte dann gefärbt und eingedeckt. Zum Auftakt stelle Rolf-Dieter Müller die Grundlagen der Färbetechniken vor, danach kamen die Färbungen W3A von Robin Wacker und die darauf beruhende Simultan- färbung W3Asim II von Rolf Dieter Müller zum Einsatz, die von ihrem Entwickler bzw. von Jörg Weiß vorgestellt und im Rahmen eines Workshops durchgeführt wurden.
Anschließend wurden die Schnitte im Euparal eingedeckt, so dass jeder Teilnehmer eines oder mehrere selbst erstellte Präparate mit nach hause nehmen konnte.
Es war wieder schön in Darmstadt!
Wie immer bei solchen gelungenen Veranstaltun- gen: der Tag war viel zu schnell vorüber. Neben den offiziellen Programmpunkten war auch dieses Mal wieder genügend Raum für Gespräche untereinander, der auch weidlich genutzt wurde, wie es immer so ist, wenn man sich einige Monate nicht gesehen hat. So konnte so manch einer ein schon länger gewälztes Problem lösen, sich mit neuen Chemikalien oder Gerätschaften eindecken oder einen entscheidenden Tipp für seine eigenen mikroskopischen Arbeiten mit nach hause nehmen.
Somit geht unser Dank für die sehr schöne Veranstaltung an die Ausrichter des Arbeitskreises Mikroskopie Rhein/Main/Neckar und da insbesondere an Detlef Kramer und Rainer Teubner, die die Hauptlast der Organisation getragen haben und auch mit ihren Beiträgen in erster Reihe standen. Auch die Verantwortlichen an der TU Darmstadt schließen wir mit ein: es ist nicht selbstverständlich, dass ein privater Arbeitskreis die Räumlichkeiten und die Ausstattung einer Universität in diesem Umfang nutzen darf.
Und natürlich danken wir auch für die für alle Teilnehmer kostenfrei bereitgestellten Würstchen samt Brezen und Brötchen, eine schöne Sitte der Darmstädter, die nun schon fast eine Tradition geworden ist. 
Impressionen aus Darmstadt
  • Die ersten Teilnehmer sind schon da ...
  • Überall bilden sich Grüppchen, es gibt immer etwas zu sehen und zu bereden.
  • Michael Dillberger hat einen Stapel seiner Präparate von sagitalen Schnitten durch den Kopf der Hausmaus zu rVerfügung gestellt. Auch hier noch einmal herzlichen Dank!
  • Detlef Kramer beim Zusschneiden eines Blattes der Schneerose  (Helleborus niger).
  • Rainer Teubner hat verschiedene Proben in PEG 1500 Einbettung zum Schneiden zur Verfügung gestellt.
  • Arbeit am Mikroskop.
  • Erwischt! ;-)
  • Alle Materialien griffbereit ...
  • Fehlende Chemikalien konnten bei Klaus Herrmann erworben werden.
  • Das kleine HM war natürlich auch wieder mit von der Partie.
  • Chemikalienbasar ... ;-)
  • Kurze Erläuterungen zum Einsatz von Einmalkanülen als Miniaturskalpell.
  • Ein paar Schnitte sind gelungen.
  • Arbeit am Mikroskop.
  • Arbeit am Mikroskop.
  • Rolf-Dieter Müller beim Vortrag zu den Grundlagen der Färbetechnik.
Text:
Jörg Weiß
Bilder:
Horst-Dieter Döricht
Joachim Höhland
Jörg Weiß
Strich_540_schmal.jpg

Bild des Monats

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Stomagruben an der Blattunterseite eines frischen, unfixierten Schnittes des Oleanders (Nerium oleander) bei einer Vergrößerung von 200x. Aufnahme von Jörg Weiß.
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Männlicher Eibenzapfen (Taxus baccata) mit Pollen von Horst-Dieter Döricht
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Spross des Efeus (Hedera helix) in W3Asim II - Färbung. Aufnahme mit einer Smartphone Kamera freihändig durch das Okular von einer Teilnehmerin der Lehrerfortbildung am Grotenbach Gymnasium Gummersbach.
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Ungefärbter Querschnitt durch das Blatt des Pampasgrases (Cortaderia selloana) von Jörg Weiß
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Parietin-Sublimation im freien Raum an Stahlwolle von Heike Buchmann
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Zwei Algen der Art Micrasterias rotata, Aufnahme von Rudolf Krönung.
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Rückenschild und Flügelansätze der Grünen Futterwanze, Aufnahme von Horst-Dieter Döricht
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Mit W3Asim II gefärbter Querschnitt durch den Thallus eines Blasentangs (Fucus vesiculosus), Aufnahme von Jörg Weiß.
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Gelbe Blattwespe (Nematus tibialis), Aufnahme von Horst-Dieter Döricht.
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Juni 2013
Gold in der lamellaren Verwachsung von Kupferkies (gelb) und Bornit (rotbraun). Grube Hohlestein an der Eisernhardt, Siegen. Aufnahme Prof. Holger Adelmann.
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Spinnenfaden bei 1000-facher Vergrößerung im DIC. Präparation und Schwarzweiß-Aufnahme von Anton Berg.
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Papyrus (Cyperus papyrus) ungefärbt in der Primärfluoreszenz. Präparation und Aufnahme von Rolf-Dieter Müller.
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Diatomee im Interferenz-Phasenkontrast. Präparation und Aufnahme von Frank Fox.
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Ungefärbter Querschnitt durch das Blatt einer Kamelie. Präparation und Aufnahme von Jörg Weiß.
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Januar 2013
Leitbündel aus dem Mittelstrang der Frucht eines Zitronenbaums (Citrus x limon). Das filigrane Präparat ist nur 7 µm dick und wurde von Anton Berg erstellt. Zum Vergleich: die meisten hier gezeigten botanischen Schnitte haben eine Dicke von ca. 50 µm. Aufnahme von Jörg Weiß.
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Dezember 2012
Anschliff einer Kohle aus der Grube Fürst Leopold in der Auflichtfluoreszenz; Anregung mit einer Wellenlänge von 470 nm. Aufnahme von Dr. Horst Wörmann.
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Schwimmhaare auf der Blattoberseite eines tropischen Schwimmfarns aus der Familie Salvinia. Aufnahme von Frank Fox.
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Oktober 2012
Rezente Diatomee Bacteriastrum furcatum Shadbolt aus dem Golf von Thailand. Aufnahme von Päule Heck.
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September 2012
Die hier gezeigte Spaltöffnung aus Rhynie Chert Material ist 400 Millionen Jahre alt. Aufnahme von Holger Adelmann.
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August 2012
Eier einer Zuckmückenart (Chironomidae) im Phasenkontrast, Aufnahme von Frank Fox.
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Juli 2012
Porträt einer Frühen Adonislibelle (Pyrrhosoma nymphula), Aufnahme von Frank Fox.
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Juni 2012
Dünnschliff eines Quarzitschiefers aus den Italienischen Alpen, Dicke ca. 25 µm. Aufnahme von Holger Adelmann.
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Mai 2012
Tracheen im Xylem des Korallenbaums, Spross, Färbung W3Asim II, Vergrößerung 200x. Aufnahme von Jörg Weiß.
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April 2012
Porträt einer zwei Tage alten Fliegen. Aufnahme von Horst-Dieter Döricht.
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März 2012
Aus der Schmelze kristallisiertes Methylsulfonal im polarisierten Licht. Aufnahme von Frank Fox
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Februar 2012
Die Kieselalge Achnantes longipes. Aufnahme von Frank Fox
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Januar 2012
Primäres Xylem und Markparenchym aus dem Spross der Gewöhnlichen Jungfernrebe. Ungefärbtes Präparat, Aufnahme von Jörg Weiß.
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Dezember 2011
Flügelschuppen eines Großen Fuchses (Nymphalis polychloros) im Auflicht. Aufnahme Frank Fox.
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November 2011
'Dazu muss ich sagen, dass es mir nicht um irgendeine Form wissenschaftlicher Fotografie ging. Ich habe wilde Gemische hergestellt und dann nachgesehen, wie das Produkt aus sah. ... Genieß' das Spiel der Farben und Formen.' Aufnahme von Herne.
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Oktober 2011
Glockentierchen (Vorticellidae) im differenziellen Interferenzkontrast. Aufnahme von Frank Fox.
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September 2011
Die Radiolarie Hexacontium papillosum aus einem Präparat von Albert Elger. Aufnahme von Päule Heck.
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August 2011
Querschnitt durch den Spross des Gartenbambus (Fargesia murieliae). Vergrößerung 100x, Färbung W3Asim II. Aufnahme Jörg Weiß mit Leica C-Plan 10x an Leica DME. Kamera Canon PS A520.
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Juli 2011
Micrasterias rotata aus einer Wasserprobe von der Wuppertalsperre. Aufnahme Holger Adelmann mit der Moticam 2300 am Leitz Orthoplan mit 40er Plan Fluotar und DIC.
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Juni 2011
Bild 1
Angeschliffene Foraminifere aus einem Hydrobienkalk des Untermiozän. Fundort Dexheim bei Mainz. Präparation Fa. Krantz, Aufnahme Prof. Holger Adelmann.
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Juni 2011
Bild 2
Kopf mit Mundwerkzeugen und vorderes Körperdrittel einer nicht näher bestimmten Zuckmückenlarve (Chironomus sp.). Präparation und Aufnahme von Frank Fox.
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Mai 2011
Querschnitt vom Rollblatt des Strandhafers (Ammophila arenaria), Schnittdicke ca. 50 µm, Färbung Wacker W3A. Stitch aus 240 Einzelaufnahmen mit Zeiss Standard WL, Plan Apo 25x/0.65, Kamera Canon EOS 5D MK II mit Vollformat-Chip. Stitching mit Canon Photostitch.
Präparat von Jörg Weiß, Aufnahme von Joachim Schwanbeck.
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April 2011
Eidechsenschwanz (Houttuynia cordata), Abdruck von der Blattunterseite, erstellt mit UHU Hart. Hellfeld.
Vergrößerung 200x, Länge des Bildausschnitts im Objekt ca. 0,5 mm. Aufnahme und Präparation von Jörg Weiß.
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März 2011
Auskristallisierte Mineralstoffe aus flüssigem Kunstdünger. Zeiss Jenamed mit Planapochromat 12,4x CF250, polarisiert mit Lambda-Platte, Einzelaufnahme mit Vollformat-Kamera Canon 5D Mark II.  Aufnahme und Präparation von Frank Fox.
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Februar 2011
Nadelquerschnitt der Schlangenhaut-Kiefer (Pinus heldreichii). Aufnahme und Präparation von Rolf-Dieter Müller, Stitch aus ca. 70 Einzelbilder. Schnittdicke 25 µm, Färbung Wacker W3A (Acridinrot, Acriflavin, Astrablau).
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Januar 2011
Achtung, großes Bild!
Eidechsenschwanz (Houttuynia cordata), Leitbündel. Aufnahme von Prof. Holger Adelmann, Präparat von Jörg Weiß.
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Dezember 2010
Metapelit, Dicke ca. 25 µm, Präparation durch Willi Tschudin, Aufnahme von Dr. Horst Wörmann.
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November 2010
Simocephalus vetulus (Anomopoda), der Plattkopf- Wasserfloh. Aufnahme von Päule Heck.
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